血清是由血漿去除纖維蛋白而形成的一種很復雜的混合物，其組成成份雖大部分已知，但還有一部分尚不清楚，且血清組成及含量常隨供血動物的性別、年齡、生理條件和營養條件不同而異。血清中含有各種血漿蛋白、 多肽、脂肪、碳水化合物、生長因子、激素、無機物等，這些物質對促進 細胞生長或抑制生長活性是達到生理平衡的。

　　關于血清的幾種常見性問題

　　1. 正常情況下，融化后血清的外觀顏色應該是？

　　血清為動物來源，成分復雜，不同批次間會存在一些外觀上的差別。一般情況下，它們的顏色可能是金黃色、紅色、琥珀棕色或者是介于三者之間。

　　2. 血清應如何保存？

　　未拆封的血清應存放于-15至-20℃，避免反復凍融。拆封后的血清應無菌分裝成一次的用量并存放于-15至-20℃，在產品質量證書標識的效期內均可使用。2-8℃溶解后建議盡快使用。

　　3. 血清應如何融解？

　　從冰箱中取出血清，放于2-8℃融化，融化過程中不時旋轉(swirling mix)混勻。充分融解后分裝或平衡到室溫后使用

　　4. 為什么有時血清中出現絮狀沉淀？是否需要去除？如何去除？

　　多種原因可能導致絮狀沉淀的形成，常見的原因之一是融化過程中，脂蛋白聚集所致。該現象一般不會影響產品質量。可以400g離心5分鐘，取上清，然后過濾。根據需要選擇合適的濾膜孔徑，一般常用的是0.22um PES材質的濾膜。為避免濾膜阻塞，建議離心后取上清加入培養基內一起過濾而不是直接過濾血清。

　　5. 為什么存放于冰箱中的血清會出現沉淀？如何避免該現象？

　　在2-8°C條件下存放，血清中的多種蛋白或脂蛋白會形成肉眼可見的沉淀，如血纖蛋白(fibrin)，單體時處于溶解狀態，在凍融過程中會發生聚集，形成肉眼可見的沉淀。但該現象一般不會影響血清的性能。可以400g離心5分鐘，取上清，然后過濾。根據需要選擇合適的濾膜孔徑，一般常用的是0.22um PES材質的濾膜。為避免濾膜阻塞，建議離心后取上清加入培養基內一起過濾而不是直接過濾血清。為盡量避免出現上述現象，建議血清分裝成一次性用量存于-15°至-20℃冰箱，避免反復凍融和融化后的血清在2-8°C條件下長時間放置。

　　6. 血清是否需要做滅活處理？

　　這取決于您的應用。

　　滅活過程中，會導致血清中某些成分被破壞，如氨基酸，維生素，生長因子等。所以只有在您的實驗對血清有特殊要求時，才會考慮對血清進行滅活處理。如您的實驗對血清中的某種組分敏感，需要去除該組分。常見的情況是需要去除血清中的補體蛋白，因為補體在機體中參與細胞殺傷，巨噬細胞和淋巴細胞活化，肥大細胞和血小板組胺釋放，平滑肌收縮等過程，所以一般在免疫學相關研究中及肌細胞和干細胞的培養過程中需要對血清進行滅活處理。

　　7. 如何進行血清滅活處理？

　　血清請先按上述“血清應如何融解”中的操作步驟融化和混勻，熱滅活時請將血清置于56℃水浴30分鐘。為盡量減少熱滅活對血清品質的影響，一次滅活的血清體積不宜過大。應該準備同樣的容器裝相等體積的水(與血清相同溫度)，滅活時將裝有血清和水的容器同時放入56℃水浴, 在裝水的容器中放置溫度計，加熱過程中不時輕輕旋轉混勻血清，當溫度計顯示達到56℃左右，開始計時。56 ℃水浴后，建議馬上轉移到冰上降溫。

　　8. 為什么需要對血清進行gamma射線輻照？

　　gamma 射線輻照的目的是滅活血清中的病毒，一般情況下，25-40kGy和30-45kGy是常用的輻射劑量。

　　9. 如何應對血清的批間差？

　　血清產品通過嚴格的質控盡可能縮小批間差，但由于血清本身的特點和來源，無法*避免批間差。客戶可以通過做預測試等方式，選擇可滿足要求的血清批次。